Sélection de médias biofiltrants pour l’achigan à grande bouche- Caractéristiques des biofilms et performances de croissance
Achigan à grande bouche (Micropterus salmoides), également connu sous le nom de bar de Californie, appartient aux Actinopterygii, Perciformes, Centrarchidae, Micropterus. Il est originaire de Californie, aux États-Unis, et présente des avantages tels qu'une croissance rapide, un goût délicieux, une nutrition riche et une valeur économique élevée. Il est devenu l’une des espèces d’aquaculture d’eau douce les plus importantes en Chine. Ces dernières années, dans le contexte de la transformation et de la modernisation du secteur de la pêche et du développement vigoureux de la pêche numérique et intelligente, l'aquaculture industrialisée en recirculation a progressivement émergé. Le mode d'aquaculture de l'achigan à grande bouche passe également de la culture traditionnelle en étang au mode d'aquaculture en recirculation vert et efficace. L'aquaculture en recirculation présente des avantages tels qu'une économie d'eau et de terres, une densité de peuplement élevée et une gestion pratique. Grâce à des méthodes et des équipements physiques, biologiques et chimiques, les matières solides en suspension et les substances nocives présentes dans le plan d'eau sont éliminées ou converties en substances inoffensives, de sorte que la qualité de l'eau réponde aux besoins de croissance normaux des espèces cultivées, réalisant ainsi le recyclage de l'eau dans des conditions d'aquaculture à haute densité -. Il a obtenu de bons avantages économiques chez plusieurs espèces cultivées.
Actuellement, la recherche sur l'aquaculture en recirculation de l'achigan à grande bouche se concentre principalement sur la reproduction, la nutrition alimentaire, la sélection des souches, l'alimentation précise, les changements de l'environnement aquatique et la qualité nutritionnelle. La recherche sur l'aquaculture industrielle en recirculation en intérieur de l'achigan à grande bouche se concentre principalement sur l'élevage de poissons juvéniles de grande taille, et la pisciculture adulte à cycle complet n'a pas été largement encouragée. Le principal défi auquel est confrontée l'aquaculture en recirculation de l'achigan à grande bouche est de maintenir un bon environnement aquatique dans des conditions de haute -densité pour assurer la croissance normale des espèces cultivées. Le traitement de l’eau est au cœur de l’aquaculture en recirculation, et les médias biofiltrants efficaces pour le traitement de l’eau constituent la base du système de traitement de l’eau. Bien qu'il existe de nombreux rapports sur la purification de l'eau par des médias biofiltrants, des rapports spécifiques sur l'aquaculture industrielle en recirculation de l'achigan à grande bouche, en particulier en ce qui concerne le dépistage des médias biofiltrants efficaces pour le traitement de l'eau, la structure de la communauté microbienne des biofilms sur différents médias biofiltrants, les effets du traitement et les impacts sur la croissance des espèces cultivées, font défaut. Trois types de médias biofiltrants ont été sélectionnés, parmi lesquels les médias biofiltrants en éponge carrée et en boule à lit fluidisé sont peu coûteux - et simples à utiliser, et ont été largement utilisés dans le traitement des eaux résiduaires de l'aquaculture ; Mutag Biochip 30 (en abrégé Biochip) est un nouveau type de média biofiltrant apparu ces dernières années, présentant des avantages de résistance aux chocs et de longue durée de vie, mais ses effets d'application pratique n'ont pas été rapportés. À cette fin, la technologie de séquençage à haut débit de l'ADNr 16S - a été utilisée pour analyser la situation de formation de biofilm des trois médias biofiltrants de traitement de l'eau, tout en analysant simultanément la situation de croissance de l'achigan à grande bouche, afin d'éliminer les médias biofiltrants pratiques de traitement de l'eau et de fournir des médias de traitement de l'eau efficaces pour l'aquaculture en recirculation industrialisée de l'achigan à grande bouche.
1. Matériels et méthodes
1.1 Matériel d'essai
Les médias biofiltrants sélectionnés pour ce test étaientéponge carrée, Biopuce, etboule à lit fluidisé, comme le montreFigure 1. Le matériau éponge carré est du polyuréthane, en forme de cube avec une longueur de côté de 2,0 cm, une surface spécifique (3,2~3,5) × 10⁴ m²/m³. Le matériau de la Biopuce est du polyéthylène, en forme de cercle d'un diamètre de 3,0 cm, d'une épaisseur d'environ 0,11 cm, d'une surface spécifique de 5,5×10³ m²/m³. Le matériau de la boule à lit fluidisé est du polyéthylène, avec une surface spécifique effective de 500 à 800 m²/m³.
1.2 Regroupement expérimental
Le groupe de traitement par média filtrant en éponge carrée a été défini comme groupe T1, le biofilm média correspondant a été étiqueté B1 et l'eau d'aquaculture correspondante a été étiquetée W1 ; le groupe de traitement du média biofiltrant Biochip a été défini comme groupe T2, le biofilm média correspondant a été étiqueté B2 et l'eau d'aquaculture correspondante a été étiquetée W2 ; le groupe de traitement du média filtrant par biofiltre à lit fluidisé a été défini comme groupe T3, le biofilm du média correspondant a été étiqueté B3 et l'eau d'aquaculture correspondante a été étiquetée W3.
1.3 Système aquacole
L'expérience a été menée dans un système d'aquaculture en recirculation à la base expérimentale globale de Balidian de l'Institut des pêches en eau douce du Zhejiang.Il y avait 9 réservoirs de culture au total, volume 500 L, volume d'eau effectif 350 L. Le réservoir de biofiltre était constitué d'un aquarium en plastique mesurant 80 cm de long, 50 cm de large et 50 cm de haut, volume 200 L, volume d'eau effectif 120 L.. Le réservoir de culture et le réservoir de biofiltre ont été reliés par une pompe à eau pour former une circulation interne, débit de 3 à 4 L/min, avec aération pour l'oxygénation, oxygène dissous dans l'eau maintenu au-dessus de 5 mg/L. Les médias biofiltrants ont été regroupés de manière aléatoire, chaque type de média biofiltrant avait 3 répétitions, chaque réservoir de biofiltre était chargé de 2,0 kg de média biofiltrant, tout en suspendant simultanément une source de carbone à libération lente -. Pendant la période de culture du biofilm, 10 % de l’eau a été changée quotidiennement.Indicateurs initiaux de la qualité de l'eau : Azote total (TN) 9,41 mg/L, Phosphore total (TP) 1,02 mg/L, Azote ammoniacal (TAN) 1,26 mg/L, Azote nitrique (NO₂⁻-N) 0,04 mg/L, Indice de permanganate (DCOₘₙ) 3,73 mg/L.
1.4 Gestion des poissons d'essai et de l'élevage
L'achigan à grande bouche a été utilisé comme espèce cultivée. Avant le début du test, ils ont été acclimatés dans l'eau de recirculation pendant 7 jours.Le test a été réalisé du 11 août 2022 au 22 septembre 2022 et a duré 42 jours.. Des achigans à grande bouche sans blessures de surface, sains et vivants, ont été sélectionnés pour le regroupement, 60 poissons ont été stockés dans chaque réservoir d'élevage, nourris deux fois par jour, les heures d'alimentation étaient à 7h00 du matin et à 16h00 de l'après-midi, la quantité quotidienne d'alimentation représentait environ 1,0 % à 1,5 % de la masse corporelle totale du poisson. La masse corporelle initiale du poisson testé était de (20,46 ± 0,46) g.
1.5 Prélèvement d'échantillons
Des échantillons d'eau du réservoir du biofiltre ont été collectés tous les 2 jours, enregistrant des indicateurs tels que la température de l'eau, l'oxygène dissous, la valeur du pH et en mesurant l'azote ammoniacal et l'azote nitrite. La quantité de nourriture, la masse corporelle du poisson au début et à la fin de l'expérience et le taux de survie ont été enregistrés. Après l'expérience, 1 L d'eau de chaque réservoir de culture a été collecté à l'aide de sacs de collecte d'eau stériles, filtré à travers une membrane filtrante de 0,22 µm et stocké dans un congélateur à -80 degrés pour une utilisation ultérieure. Des échantillons de média biofiltrant de 0,5 g ont été prélevés de manière aseptique dans chaque réservoir de biofiltre, stockés dans de l'eau distillée stérilisée, secoués vigoureusement pour déloger les micro-organismes de la surface du biofilm, puis filtrés à travers une membrane filtrante de 0,22 µm et stockés dans un congélateur à -80 degrés pour une utilisation ultérieure.
1.6 Méthodes de mesure
1.6.1 Mesure de la qualité de l'eau
La température de l'eau, l'oxygène dissous et la valeur du pH ont été détectés à l'aide d'unAnalyseur portable de qualité de l'eau HACH Hq40d. La concentration d'azote ammoniacal a été mesurée à l'aide de la méthode spectrophotométrique au réactif de Nessler. La concentration d'azote nitrique a été détectée à l'aide de la méthode spectrophotométrique à l'acide chlorhydrique naphtyléthylènediamine.
1.6.2 Mesure du rendement de l'aquaculture
Les formules de calcul du taux de gain de poids, du taux de conversion alimentaire et du taux de survie du poisson sont les suivantes.
l Taux de gain de poids= (Masse corporelle finale du poisson - Masse corporelle initiale du poisson) / Masse corporelle initiale × 100 % ;
l Taux de conversion alimentaire= Consommation alimentaire / Gain de poids ;
l Taux de survie= (Nombre de poissons à la fin de l'expérience / Nombre initial de poissons au début de l'expérience) × 100 %.
1.6.3 Séquençage microbien à haut débit-
L'ADN bactérien a été extrait de l'eau et du biofilm à l'aide d'un kit d'extraction d'ADN bactérien (OMEGA Biotech, USA). Les amorces spécifiques 338F (5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3') et 806R (5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3') ont été utilisées pour amplifier les régions V3 et V4 de l'ADNr bactérien 16S. La PCR a utilisé le système de réaction TransGen AP221-02 : 4 µL de tampon 5×FastPfu, 2 µL de dNTP à 2,5 mmol/L, 0,4 µL de polymérase FastPfu, 0,8 µL de chacune des amorces directe et inverse à 5 µmol/L, 0,2 µL de BSA, 10 ng de matrice d'ADN, complétée par ddH₂O à 20 µL. Conditions de réaction PCR : 95 degrés pendant 3 min ; 95 degrés pendant 30 s, 53 degrés pendant 45 s, 72 degrés pendant 1 min, 28 cycles ; Extension à 72 degrés pendant 10 min. L'amplification PCR a été réalisée sur un instrument de réaction PCR 9700 (Applied Biosystems® GeneAmp®, USA). Les produits de PCR ont été purifiés à l’aide de billes puis soumis à un séquençage. Le séquençage a été confié à Shanghai Majorbio BioPharm Technology Co., Ltd.
1.6.4 Analyse de la diversité microbienne
Les données brutes obtenues à partir du séquençage ont d'abord été épissées, suivies d'un filtrage de contrôle qualité de la qualité des lectures et de l'effet d'épissage, ainsi que d'une correction de la direction de la séquence, ce qui a permis d'obtenir des données optimisées. Après avoir normalisé les données Clean finalement obtenues, l'analyse de regroupement OTU (Operational Taxonomic Units) et l'analyse taxonomique ont été effectuées avec une similarité de 97 %. Les histogrammes des échantillons ont été établis à l'aide d'Excel et les cartes thermiques ont été établies à l'aide de la plateforme cloud Majorbio.
1.7 Analyse des données
Le logiciel statistique SPSS 16.0 a été utilisé pour l'analyse significative des différences, et la méthode d'analyse de variance (ANOVA) de Duncan a été utilisée pour les comparaisons multiples.
2. Résultats et analyse
2.1 Temps de formation du biofilm de différents milieux biofiltrants
Comme le montreFigure 2,dans des conditions naturelles de formation de biofilm, la teneur en azote ammoniacal dans l’eau du réservoir du biofiltre a montré une tendance à l’augmentation rapide suivie d’une diminution progressive.La teneur en azote ammoniacaldans l'eau du bac biofiltre correspondant à l'éponge carrée atteint son maximum à 17 jours, à 8,13 mg/L, puis diminue progressivement,atteignant le plus bas à 41 jours, restant ensuite autour de 0,20 mg/L, indiquant quele temps de formation du biofilm pour l'éponge carrée était d'environ 17 jours. Les changements dans la teneur en azote ammoniacal dans l'eau des réservoirs de biofiltre correspondant à Biochip et dans la boule à lit fluidisé étaient fondamentalement les mêmes, montrant des changements fluctuants. Le pic d'azote ammoniacal est apparu à 21 jours, à 7,88 mg/L et 7,57 mg/L respectivement, indiquant quele temps de formation du biofilm pour la Biochip et le média biofiltrant à bille à lit fluidisé était d'environ 21 jours. La teneur en azote ammoniacaldans les cuves du biofiltre correspondant àces deux médias sont tombés au plus bas à 43 jours et 45 jours respectivement.
2.2 Modifications de la valeur du pH de l'eau dans différents réservoirs de culture
DepuisFigure 3, on peut voir que la valeur initiale du pH de l'eau de culture était de 7,3. À mesure que la durée de culture s'allongeait, la valeur du pH de l'eau dans chaque réservoir de culture présentait une tendance à la baisse. Après 12 jours, le pH de tous les réservoirs de culture était inférieur à 6,0, ce qui est défavorable à la croissance des espèces cultivées.Par conséquent, après 12 jours de formation de biofilm, il convient de prêter attention à l’ajustement de la valeur du pH de l’eau du réservoir de culture..
2.3 Analyse de la composition de la communauté microbienne sur les biofilms de différents milieux biofiltrants et dans l'eau
2.3.1 Composition de la communauté microbienne au niveau du phylum
Comme le montreFigure 4,au niveau du phylum, les bactéries dominantes sur les biofilms des trois milieux biofiltrants étaient les mêmes, toutes étant des Protéobactéries, des Actinobactéries, des Bacteroidota et des Chloroflexi. Leurs abondances relatives combinées étaient respectivement de 68,96 %, 64,74 % et 65,45 %. Les bactéries dominantes dans l’eau de culture correspondante étaient différentes. La bactérie dominante dans W1 était Actinobacteriota, avec une abondance relative de 64,66 %. Les bactéries dominantes dans W2 et W3 étaient des protéobactéries, avec des abondances relatives de 34,93 % et 50,10 % respectivement.
Fig. 4 Composition de la communauté de bactéries dans différents biofilms et eaux au niveau du phylum
2.3.2 Composition de la communauté microbienne au niveau familial
Comme le montreFigure 5, sur les biofilms des trois milieux, environ 48 % des bactéries étaient des communautés bactériennes avec des abondances relatives toutes inférieures à 3 %. Les bactéries dominantes de B1 et B2 étaient les mêmes, toutes deux étant des Xanthomonadaceae, avec des abondances relatives de 11,64 % et 9,16 % respectivement ; la bactérie dominante de B3 était JG30-KF-CM45, avec une abondance relative de 10,54 %. Les bactéries dominantes dans l’eau de culture étaient différentes de celles présentes dans le milieu biofiltrant. Les microbactéries étaient la bactérie dominante absolue dans W1, avec une abondance relative de 62,10 % ; les bactéries dominantes de W2, outre les Microbacteriaceae (13,82 %), comprenaient également une certaine proportion de Rhizobiales (8,57 %) ; la bactérie dominante dans W3 était les Rhizobiales, avec une abondance relative de 38,94 %, suivie par les Flavobacteriaceae, avec une abondance relative de 15,89 %.
Les 50 principales espèces au niveau du genre ont été comptées. Après traitement des valeurs numériques, les changements d’abondance des différentes espèces dans les échantillons ont été affichés à travers le dégradé de couleurs des blocs de couleur. Les résultats sont présentés dansFigure 6. Leifsonia était la bactérie dominante dans W1, avec une abondance relative de 56,16 % ; les bactéries dominantes dans W2 étaient Leifsonia (10,30 %) et Rhizobiales_Incertae_Sedis (8,47 %) ; la bactérie dominante dans W3 était Rhizobiales_Incertae_Sedis, avec une abondance relative de 38,92 %. Parmi les bactéries identifiables sur les biofilms, Thermomonas était le genre dominant dans B1, avec une abondance relative de 4,71 % ; les genres dominants en B2 et B3 étaient Nitrospira, avec des abondances relatives de 4,41 % et 2,70 % respectivement.
Fig. 5 Composition de la communauté de bactéries dans différents biofilmset de l'eau au niveau familial
Fig. 6 Carte thermique de la composition de la communauté bactérienne dans différents biofilms et eaux au niveau du genre
2.4 -Analyse de la diversité des communautés microbiennes sur les biofilms de différents milieux biofiltrants et dans l'eau
Comme le montreTableau 1, l'indice de Shannon des communautés microbiennes sur les biofilms des différents milieux était supérieur à celui de l'eau de culture correspondante, alors que l'indice de Simpson était inverse. En analysant l'eau de culture correspondante, l'indice de Shannon de la communauté bactérienne de W2 était le plus élevé, significativement supérieur à celui de W1 et W3, tandis que l'indice de Simpson était significativement inférieur à celui de W1 et W3, indiquant que sa diversité - était la plus élevée. Différent de la -diversité de l'eau de culture, bien que l'indice de Shannon de la communauté microbienne bactérienne dans le milieu B2 soit le plus grand et que l'indice de Simpson soit le plus petit, il n'y avait pas de différence significative entre les trois milieux biofiltrants. La couverture de séquençage de tous les échantillons était supérieure à 0,990, ce qui indique que la profondeur de séquençage pourrait refléter le niveau réel des échantillons.
2.5 Effets de différents milieux biofiltrants sur la croissance de l’achigan à grande bouche
Tableau 2montre la situation de croissance de l'achigan à grande bouche dans les différents groupes de médias biofiltrants. Après 44 jours de culture, la masse corporelle finale et le taux de gain de poids de l'achigan à grande bouche dans le groupe de culture en éponge carrée étaient significativement plus élevés que ceux des groupes de boules à lit fluidisé et de Biochip, et le taux de conversion alimentaire était significativement inférieur à celui des autres groupes. Le taux de survie de l’achigan à grande bouche dans chaque groupe était supérieur à 97 %, sans différence significative entre les groupes.
3. Conclusion et discussion
3.1 Temps de formation du biofilm de différents milieux biofiltrants
Les biofilms se fixent à la surface des médias biofiltrants. Le matériau, la structure et la surface spécifique du média biofiltrant sont les principaux facteurs affectant la formation du biofilm. Il existe deux méthodes courantes de culture de biofilms : la méthode de formation de biofilm naturel et la méthode de formation de biofilm inoculé. Différentes méthodes de formation du biofilm affectent le temps de maturation du biofilm. Hu Xiaobing et coll. a utilisé quatre méthodes différentes pour la formation de biofilm, et les résultats ont montré qu'en utilisant des méthodes telles que l'ajout de chitosane, d'ions fer et l'inoculation avec des boues déversées pour la formation de biofilm, le temps de maturation du biofilm était plus court que celui de la méthode naturelle de formation de biofilm. Bien que l’ajout de micro-organismes bénéfiques ou de substances actives puisse raccourcir le temps de formation du biofilm, il existe des problèmes tels qu’une difficulté à obtenir l’inoculum, une construction de processus complexe et un coût élevé. Guan Min et al., dans des conditions de faible teneur en matière organique, ont directement utilisé de l'eau brute pour la formation de biofilm, et le réservoir du biofiltre a démarré avec succès grâce à la formation naturelle de biofilm après environ 38 jours. Ce résultat de recherche est similaire aux résultats de cette étude. Les résultats de cette étude montrent que dans les mêmes conditions de formation du biofilm, le temps de formation du biofilm de l’éponge carrée était plus court que celui des deux autres médias biofiltrants. Cela peut être lié à la grande surface spécifique, à la forte hydrophilie et à la facilité de fixation du biofilm de l’éponge carrée. La surface spécifique de l'éponge carrée atteint 32 000 ~ 35 000 m²/m³, bien plus grande que celle des deux autres supports. De plus, le matériau de l'éponge carrée est du polyuréthane, qui se dilate lorsqu'il est exposé à l'eau, présente une hydrophilie élevée et favorise la fixation et la croissance de micro-organismes dans l'eau. Les résultats des recherches de Li Yong et al. ont également montré que les performances de démarrage-et les performances d'élimination de l'azote ammoniacal de l'éponge en polyuréthane étaient meilleures que celles du polypropylène, ce qui concorde avec les résultats de cette étude. De plus, dans cette étude, la surface spécifique du média biofiltrant Biochip atteignait 5 500 m²/m³, soit beaucoup plus grande que celle du média biofiltrant à bille à lit fluidisé, mais le temps de formation du biofilm était fondamentalement le même que celui du média à bille à lit fluidisé. Cela peut être lié à la taille des pores. Certaines études ont souligné que l’échelle spatiale interne des milieux biofiltrants affecte la croissance des biofilms. Bien que certains médias biofiltrants aient une grande surface spécifique, leurs pores sont fins et la taille des pores est beaucoup plus petite que l'épaisseur du biofilm mature, ce qui peut facilement conduire à un blocage des pores, rendant difficile l'accumulation maximale du biofilm dans les pores. Les pores de la biopuce sont petits, ce qui entraîne une croissance plus lente du biofilm et un temps de formation plus long.
3.2 Composition de la communauté microbienne des milieux biofiltrants et de l’eau de culture
Dans cette étude, les bactéries dominantes sur les milieux biofiltrants et dans l’eau de culture correspondante étaient différentes. L'indice de Shannon des biofilms sur les milieux biofiltrants était supérieur à celui de l'eau de culture correspondante, indiquant que les milieux biofiltrants ont pour effet d'enrichir les micro-organismes. Ceci est cohérent avec les résultats de recherche de Hu Gaoyu et al. De nombreux facteurs affectent la structure de la communauté microbienne, tels que le type de support, la profondeur du filtre, la salinité, la concentration en matière organique, etc. Le même média biofiltrant, dans des conditions de culture différentes, aura différentes communautés microbiennes sur le biofilm. L'auteur a déjà étudié la situation de formation de biofilm à partir d'un média biofiltrant à billes à lit fluidisé dans un système d'aquaculture en recirculation pour la crevette géante d'eau douce (Macrobrachium rosenbergii). Les résultats ont montré que le phylum dominant sur son biofilm était les Firmicutes, alors que dans cette étude, le phylum dominant sur le biofilm de la boule à lit fluidisé était les protéobactéries. La principale raison de cette différence réside peut-être dans les différents environnements aquacoles. Les trois milieux biofiltrants utilisés dans cette étude présentaient les mêmes conditions initiales pour cultiver des biofilms. Il est possible qu’en raison des différentes caractéristiques physiques des milieux, l’épaisseur du biofilm formé et l’environnement interne soient également différents, entraînant des différences dans les communautés microbiennes. Par conséquent, la différence entre les porteurs est la principale raison des différences dans les communautés microbiennes. De plus, au cours du processus d’aquaculture, l’environnement aquatique et la communauté microbienne s’influencent mutuellement. Les raisons des différences dans les communautés microbiennes peuvent être liées à des facteurs environnementaux. Par exemple, les recherches de Yuan Cuilin ont indiqué que le nombre total de bactéries hétérotrophes dans le corps ; Fan Tingyu et coll. On pensait que la valeur du pH pouvait affecter de manière significative la teneur totale en azote de l'eau et jouait un rôle clé dans la répartition des communautés bactériennes aquatiques dans les sections des rivières intérieures. L'azote ammoniacal, le phosphore total et la chlorophylle a influencent également à des degrés divers la composition des communautés bactériennes dans le plan d'eau. Les facteurs environnementaux à l’origine des différences dans la composition de la communauté microbienne dans cette étude doivent encore être confirmés.
3.3 Effets de différents milieux biofiltrants sur la croissance de l’achigan à grande bouche
D'après les résultats de croissance, l'achigan à grande bouche du groupe des éponges carrées a connu la croissance la plus rapide, avec un taux de gain de poids nettement supérieur à celui des deux autres milieux et le taux de conversion alimentaire le plus bas. Ceci est cohérent avec les résultats de recherches antérieures. Dans cette étude, la formation de biofilm et l’aquaculture ont été menées simultanément. À en juger par le temps de formation du biofilm, le biofilm éponge carré a mûri plus tôt et, après la maturation du biofilm, les concentrations d'azote ammoniacal et d'azote nitrite dans l'eau étaient toujours inférieures à celles des deux autres milieux. De plus, l'éponge carrée a une certaine capacité de filtration, la teneur en matières solides en suspension dans l'eau de culture était plus faible et l'eau était relativement claire. La meilleure croissance de l’achigan à grande bouche dans le groupe des éponges carrées peut être liée à la bonne qualité de l’eau. Cependant, les effets purifiants des éponges carrées sur l’azote total, le phosphore total et l’indice de permanganate dans l’eau nécessitent une étude plus approfondie. Il convient de noter qu’au cours de l’expérience, la valeur du pH a montré une tendance globale à la baisse. Après 12 jours de culture, la valeur du pH de tous les réservoirs de culture était inférieure à 6,0, ce qui concorde avec les résultats des recherches de Zhang Long et al. La diminution de la valeur du pH est due au fait qu'un grand nombre d'ions hydrogène sont produits pendant le processus de culture du biofilm, entraînant une diminution de la valeur du pH de l'eau. Par conséquent, pendant le processus de formation du biofilm, il est nécessaire d’ajuster rapidement la valeur du pH de l’eau du réservoir de culture pour garantir qu’elle se situe dans la plage de croissance normale des espèces cultivées. Compte tenu du coût économique, le prix du marché de l’éponge carrée est de 70 à 100 RMB/kg et son coût se situe entre les deux autres médias biofiltrants. Combinée aux résultats de croissance, à court terme, l'éponge carrée est un média biofiltrant de traitement de l'eau relativement pratique pour l'aquaculture en recirculation. Cependant, l'éponge carrée a une faible ténacité et une courte durée de vie. Ses effets d'utilisation à long terme et ses effets sur l'aquaculture nécessitent une vérification plus approfondie.
En résumé,dans des conditions naturelles de formation de biofilm, le média biofiltrant en éponge carrée a le temps de formation de biofilm le plus court, un prix modéré, et la masse corporelle finale et le taux de gain de poids de l'achigan à grande bouche dans le groupe des éponges carrées étaient significativement plus élevés que ceux des deux autres médias biofiltrants. À court terme, il s’agit d’un média biofiltrant de traitement de l’eau relativement pratique pour l’aquaculture en recirculation.